Scanner für die Digitale Pathologie | Hamamatsu Photonics K. K./Hamamatsu Photonics Deutschland GmbH | MetaSystems Hard & Software GmbH www.metasystems-international.com
| Olympus www.olympus-lifescience.com | 3DHISTECH LTD / Sysmex Deutschland GmbH www.sysmex.de/digitalepathologie | Philips www.philips.de/healthcare/resources/landing/philips-intellisite-pathology-solution | PreciPoint GmbH www.precipoint.com | TissueGnostics GmbH | |||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Erk Klopp | sales@metasystems.de | Dr. Anja Freese | Dip.Ing Flavio Giacobone | Dr. Olaf Scheel | Dr. Christian Tank; Tel. 01525/7966778; christian.tank@philips.com | Birgit Müller | Adj. Prof. Dr. Rupert Ecker | |||||
Produktname | NanoZoomer S360
| NanoZoomer S60
| Metafer
| Grundium OCUS40 , OCUS20
| Olympus SLIDEVIEW VS200
| Pannoramic Flash DESK DX
| Pannoramic 1000 DX
| Pannoramic MIDI II / SCAN II
| Philips Pathology Scanner SG60 & SG300
| Fritz - Just scan it! (Slide Scanner)
| TissueFAXS SL PLUS
| |
Systemdaten | Bauart | kompakt | kompakt | modular-offen | kompakt | Box slide scanner | integriert, kompaktes Bench-Top-Gerät | integriert, Bench-Top | integriert, Bench-Top | kompakt-integrierter Vollautomat | einfach, kompakt, integriert, offen | modular |
Breite x Höhe x Tiefe (cm) | 75 x 132,3 x 69 inkl. Rack | 68,5 x 70 x 68,3 | 130 x 80 (ohne SL), 200 x 80 (mit SL) | 18 x 19 x 18 | Scannereinheit: 57,2 x 65,2 x 67, 2 Autoloader: 105,9 x 88,5 x 67,2 | ca. 39 x 27 x 25,5 | 154 x 100 x 90 | ca. 70 x 50 x 50 (MIDI); 74 x 53 x 45 (SCAN) | 80 x 67,5 x 68 & 95 x 67,5 x 68 | 29,5 x 53,2 x 44,2 | 98 x 102 x 52 | |
Gewicht (kg) | 116,5 inkl. Rack | 79 | 60 (ohne SL), 10 (mit SL) | 3,5 | 94 bis 187 | 11 | 270 | 23 (MIDI); 26 (SCAN) | 142 & 150 | 25 | 125 | |
Unterstützte Abmessungen der OT (B x L x D in mm) | 26(25) x 76(75) x 1,1 ± 0,1 | Single 26(25) x 76(75) x 1,1 ± 0,1 Double 52 x 76(75) x 1,1 ± 0,1 | 27 x 46, 45 x 46, 52 x 76, 75 x 50, 78 x 122 (B x L) | 25–26 x 75–76 x 0,9–1,2 | 1x3 OT: 25–26,5 x 75–76,5 x 0,9–1,2 2x3 OT: 51–53 x 75–76,5 x 0,9–1,2 4x3 OT: 100–102 x 75–76,5 x 0,9–1,2 5x4 OT: 126–128 x 100–102 x 0,9–1,2 | 25–26 x 75–76,2 | 50–52 x 0,9–1,2 | 25–26 x 75–76,2 | 50–52 x 0,9–1,2 | 25–26 x 75–76 x 0,9–1,2 | 25 x 75 ± 1 x 0,9–1,2; 50 x 75 ± 1 x 0,9–1,2 | alle Standard-OT, auch doppelte Größe | ||
Slidehandling | horizontal | horizontal | automatisch, horizontal | manuell horizontal | man. in Trays, automatisch in Trays, horizontal | horizontal, 1 OT | horizontal; Slideloading u. Preview parallel zum Scanprozess | horizontal (MIDI); vertikal (SCAN), 1 OT | OT-Ladevorrichtung mit 2 Greifern | manuell | automatisch, Dauer: 13–18 Sek. | |
Objektive (Vergrößerung | NA) | 20x | 0,75 | 20x | 0,75 | Zeiss, frei wählbar, z. B.: 10x | 0,45; 40x | 0,75; 63x | 1,40 (ÖL); 100x | 1,40 (ÖL); 40x | 1,3 (ÖL) | Ocus40: Olympus X Line™ 20x | 0,8 Ocus20: Olympus X Line™ 10x | 0,4 | 2x | 0,08 und 20x | 0,8 als Standardobjektive. UIS2 Objektive von 2x–100x , Öl oder Silikonimmersion z. B. 40x Öl | 1,4 optional | ZEISS Plan Apochromat 20x | 0,8 oder 40x | 0,95; Kameraadapter 1,6-fach | ZEISS Plan Apochromat 20x | 0,8, 40x | 0,95, 40x | 1,2; Wasserimmersion (automat. wechselbar); Kameraadapter 1,6-fach | ZEISS Plan Apochromat 20x | 0,8, 40x | 0,95 (automat. wechselbar), Kameraadapter 0,63-fach oder 1,0-fach | Nikon-Objektiv (0,75 NA) mit zusätzl. LS für 40x Äquivalent | Olympus: 20x | 0,5; 40x | 0,75 | alle Zeiss-Objektive: 2,5x bis 100x | |
Resultierende Vergrößerung pro Objektiv (x-fach) | 20x | 40x | 20x | 40x | 10x, 20x, 40x, 63x, 100x | Ocus40: 40x, Ocus20: 20x | von 2x bis 100x | 20x mit 1,6 Adapter: 41-fach, 0,25 µm/Pixel 40x mit 1,6 Adapter: 82-fach, 0,12 µm/Pixel | 20x mit 1,0 Adapter: 60-fach, 0,17 µm/Pixel, 20x mit 0,63 Adapter: 40-fach, 0,27 µm/Pixel 40x mit 1,0 Adapter: 110-fach, 0,09 µm/Pixel, 40x mit 0,63 Adapter: 70-fach, 0,14 µm/Pixel | 40x | abh. v. Objektiv, Überzoom mgl., Bilds. und SD | maximum 999 % Zoomlevel | ||
Pixelauflösung (µm/Pixel) je Objektiv | 0,46 | 0,23 | 0,46 | 0,23 | 0,172; 40x: 0,086 | Ocus40: 40x 0,25, Ocus20: 20x 0,50 | von UPLXAPO10X: 0,548 bis UPLXAPO100XO: 0,055 | 0,25 (40x) | 20x (0,5 NA) 0,55; 40x (0,5 NA) 0,28 | DL: 20x: 0,28; 40x: 0,14 / FL: 20x: 0,32; 40x: 0,16 | ||||
Digitaler Bildsensor (Typ | Pixel) | CMOS | 5 MP | BF = CMOS | 12 MP, FL = ORCA-Flash 4.0 | CMOS, Farbe oder s/w | 12 MP (4.096 x 3.000 px | Monochrome Sensor | 12 MP | Farbsensor | 5 MP Monochrome Sensor | 3–5 MP | CMOS Color, 12 MP | CMOS Color, 12 MP | CMOS mono | 5 MP; Scientific CMOS | 4,2 MP opt. | Philips-patentierter Sensor-Chip, 4 Pixel/µm | CMOS Color Camera | 2560 x 1920 | sCMOS | 2304 x 2304 oder 2048 x 2048 | |
Bildprozessierung | ICC-Farbprofil | ICC-Farbprofil | autom. Weißabgleich, Belichtungskorrektur, dynamischer Autofokus, autom. digit. Bildbearbeitung | automatischer Weißabgleich, Farbkorrekturen, dynamischer Autofokus, Z-Stacking | Z-Stacking, multiple observation methods, Multiplexing, 3D deconvolution, Deep Learning AI analysis | automat. Weißabgleich; ICC-Farbprofile; vollautomatische, KI-gestützte Gewebeerkennung; adaptive automat. Fokusmap mit interner Qualitätskontrolle und automat. Re-Scan | automat. Weißabgleich; ICC-Farbprofile; vollautomat. Gewebeerkennung; adaptive automat. Fokusmap; man. Setzen von Fokuspunkten mgl. | kontinuierlicher Autofokus & optimierte Gewebeerkennung; Farbtreue | automatischer und manueller Fokus, automatisches Echtzeit-Stitching | Autofokus, Pseudo-IHC, HDR | ||
Unterstützte Mikroskopierverfahren | DL | DL & FL | DL, FL, ÖL, Phasenkontrast, DIC u. a. | DL, Hellfeld | DL, FL, ÖL (mit automatischem Öl Management), Dunkelfeld, Phasenkontrast, DI | DL | DL | DL, FL (optional) | DL | DL | DL, FL, ÖL, Phasenkontrast, DIC, Multispectral-, Multiplexing- und WholenSlide-Confocal Imaging,Expansion-Based Super Resolution | |
Lichtquellen-Typen | DL, Pulsed LED | DL= Pulsed LED, FL= LED SOLA SE V-nIR | beliebig | Koehler LED | Farbe: Olympus True Color LED | Fluoreszenz: White LED oder LED | Flash-Beleuchtung (DL) | Flash-Beleuchtung (DL) | 3-Kanal RGB LED (DL); Lumencor solid state Light engine (FL) | DL, LED | DL, LED | Weißlicht, Farb-LED, Laserdioden | |
Leistungsdaten | Slideloader (Typ | Ladekapazität) | automatisch | 360 (30 slides x 12 Kassetten) | automatisch | 60 (single), 30 (double) | modular | 1–400 Trays mit je 5 OT | manuell | 1 | automatisch | 6 oder 210 (1x 3 slides) | manuell | 1 OT | bis zu 50 Magazine à 20 OT | Slide-Tray | 12 OT (MIDI); bis zu 6 Magazine à 25 OT oder kontinuierliches Beladen (SCAN) | SG60 I 3 x 20 & SG300 I 15 x 20 | 2 Standardslides oder 1 Makroslide | Märzhäuser, Wetzlar | 120 OT |
Beladung aus Färberacks (Typ) | - | - | nein | N/A | N/A | nein | ja (3DHistech, Sakura, Leica) | nein | Winlab LS-20, LSM-20 & Sakura 4768 | nein | manuell | |
Bildformate (inkl. Konvertierung) | .ndpi, Raw Interleaved RGB(Y), Raw Interleaved BGR(Y), Raw Planar RGB(Y), Raw Planar BGR(Y), Windows Bitmap and TIFF | .ndpi, Raw Interleaved RGB(Y), Raw Interleaved BGR(Y), Raw Planar RGB(Y), Raw Planar BGR(Y), Windows Bitmap, TIFF and NDP Generic Raw RGB(Y) | proprietäres Format, HTML, IMS, TIF, SCN, SVS | TIFF, SVS | Olympus VSI, BigTIFF, TIF, OME TIFF, JPEG, JPEG2000, PNG | MRXS und DICOM | MRXS und DICOM | MRXS (Codierung: JPEG, JPEGXR, JPEG2000, .BMP, .PNG), Export in TIFF, MetaXML, DICOM Import aus TIFF, SVS, NDP, Roche-TIF | iSyntax, TIFF, JPEG, DICOM | JPEG, PNG, TIFF, BMP, VMIC (Konvertieren: SVS, BIGTIFF, GTIFF) | TissueFAXS, OME-TIFF, TIFF, JPEG, BMP, PNG, Bioformats | |
Z-stacks (Anzahl | Abstand) | bis zu 100 | kann eingestellt werden, | bis zu 100 | kann eingestellt werden, | frei einstellbare Auflösung von 1/40 µm; Anzahl frei wählbar innerhalb des verfügbaren Verfahrbereichs | bis zu 5 optical Z-stacks | frei definierbare Z-stacks | 30 Ebenen | 0,2 bis 2 µm | 30 Ebenen | 0,2 bis 2 µm | vorbereitet für Hochgeschwindigkeits-Multilayer-Scans (128 Layer) | ja (minimale Schrittauflösung 25 nm, Anzahl der Bilder abhängig von eingestellten Parametern) | beliebig | minimum 100 nm | ||
Autostart | Aufwärmphase (Min.) | ja | - | ja | - | nein | nein | nein | nein | nein | nein | nein | einmalige Initialisierung des Scanners (ca. 3 Min.) beim Hochfahren | nein | ca. 3 Min. beim Hochfahren | ja | ≤ 15 inkl. vollständiger Kalibrierung | ja | sofortiger Betrieb | nein | - | ||
Zeitbedarf Transportweg Loader → Objektiv (Sek.) | - | - | ca. 30 für 5 Präparate | 9 | 0 nach manuellem Laden | OT-Loading parallel zum Scanprozess | 6/3 Wechsel zwischen 2 OT im Tray/Magazin | Transport ohne Zeitverlust, ≤ 5 | kein Loader | 15 | ||
Scangeschwindigkeit , Fl. 15 x 15 mm (Vergr. I Sek.) | 20x I 30; 40x I 30 | 20x |60; 40x | 150 | 10x | 14; 20x | 60; 40x |260 | 20x | 180, 10x | 60 | 20x | 80 | 30 | 35 | 150 (MIDI), 150 (SCAN) | ≤ 43 | 20x Objektiv: 40x | ~ 120 | Objektiv 20x | 180 | |
Time to View (ca. 40x-Vergr., Fl. 15 x 15 mm) (Sek.) | - | - | 1 | 5 | 5 | ≤ 62 | < 1 (abhängig von PC-Leistung) | |||||
Speichern d. Bildes, Fl. 15 x 15 mm (Format | ZB) | - | - | - | 5 Sek | VSI file format | 5 Sek. | < 30 Sek. | Scannen und Speichern erfolgt parallel, < 30 Sek | Scannen und Speichern erfolgt parallel | Speichern ohne Zeitverlust durch permanenten Daten-Stream | 20x, 30 Sek. | abhängig v. angeschlossenem PC | paralleles Scannen und Speichern | |
Durchsatz OT/h bei ca. 40x-Vergrößerung | 82 | 20 | k. A., da von OT-Gr./Qual. abhängig | 15 | 20 | 50 | 95 | bis zu 24 | 60 | abhängig von man. Beladung und Probenart | 20 für Objektiv 20x | |
Integration & Vernetzung | Tissue Microarray (TMA) -Modul | - | - | vorhanden | N/A | N/A | ja | ja | ja | nein | auf Anfrage (mittels Gewebeerkennung) | ja |
Viewer/virtuelles Mikroskop | stand-alone, webbasiert | stand-alone, webbasiert | stationäre Review-Software oder webbasiert | integriert | integriert oder freie OlyVIA software | SlideViewer (stand-alone), InstantViewer (webb.) | SlideViewer (stand-alone), InstantViewer (webb.) | webb. Image-Management-Lösung mit integr. Viewer; zusätzl. freier Stand-alone-Viewer | stand-alone und mobil, webb. oder Desktop | integriert + stand-alone (Freeware) | ||
Selbstkalibrierung | nicht nötig | nicht nötig | ja | präkalibriert | Kalibrationsroutine für alle Observationsmethoden | ja | ja | ja | ja | ja | ja | |
STAT-Modus | priorisierte OT | ja I ja, für Kassetten und Slides | ja I ja, für Kassetten und Slides | ja, in Verbindung mit Barcode-Leser | N/A (single slide) | ja | n.a. | ja | nein | ja | nicht notwendig | nein | |
Barcode-Scanner (1-D, 2-D) | 1-D, 2-D | 1-D, 2-D | optional; 1-D und 2-D | 2-D optional | ja | 1-D und 2-D | 1-D und 2-D | 1-D und 2-D | 1-D (Code 39, 128) & 2-D (DataMatrix, Code 39, 128) | ja, auf Anfrage | 1-D und 2-D | |
Bilddaten-Management | IMS - NZConnect Serve | IMS - NZConnect Serve | Neon IMS mit Falldatenverwaltung und Workflow-Management integriert | ja | ja | IVDR-konformes Pathologie-Managementsystem für die Diagnostik (auch standortübergreifend): CaseManager mit SlideStorage DX | SlideCenter Bildmanagement und Vernetzung mehrerer Standorte; Verwaltung lokaler Speicherorte, Netzwerk- und Cloudspeicher | webb. skalierbare Speicherlösung (Langzeit-Archivierung inkl. Cloud-Lösung) | ja, on-premise oder online | Projektverwaltung und -suche | ||
Schnittstellenprotokolle | DICOM-PACS | DICOM-PACS | DICOM, HL7, CSV + TIFF | N/A | DICOM, LIS connector | DICOM, HL7, XML | DICOM, HL7, XML | DICOM, HL7, XML | HL7 v2.x, Webservices, XML, File based | diverse API auf Anfrage vorhanden | Matlab, ImageJ, Python, C++ | |
Anbindung LIS/PIS | möglich | möglich | automat. u. man. Import und Export möglich | N/A | ja | ja | ja | ja | ja | auf Anfrage | LIS, auch kundenspezifische | |
Zertifizierungen | CE-IVD | CE-IVD | CE-IVD, IVDR Class A voraussichtlich ab 2022 | CE-IVDR | CE | CE-IVD, IVDR | CE-IVD, IVDR | CE-IVD | CE-IVD, FDA, DIACAP-Zertifizierung, DICOM-Konformitätserklärung | CE. DIN EN 61326-1 (VDE 0843-20-1), DIN EN 61326-2-2 (VDE 0843-20-2-2:2013-08 | CE-IVD | |
Imageformat | .ndpi / .dcm | .ndpi / .dcm | SZI | Olympus VSI | MRXS, DICOM | MRXS, DICOM | MRXS, DICOM | iSyntax | WSI, (VMIC, SVS, BIGTIFF, GTIFF), Einzelbild: JPEG, PNG, TIFF, BMP | OME-TIFF, TIFF, JPEG, BMP, PNG | ||
| SDK verfügbar | ja | ja | Erstellen angepasster Scan- und Auswerteparametersätze (Classifier) durch den Anwender | ja | verfügbar für das VSI file Format | ja | ja | ja | ja, kostenlos verfügbar auf Philips Open Pathology Portal | auf Anfrage | nein |
Alleinstellungsmerkmale, Besonderheiten | Scanner mit Tisch | Scanner mit Tisch optional | hohe Flexibilität bei der Auswahl von Vergrößerungen und Kontrastierungsmethoden. Kombinierbarkeit von verschiedenen Workflows und Aufnahmemodalitäten (Smart Scanning). Ultra-hochauflösende Kamera ermöglicht die Wahl geringerer Vergrößerungen bei gleichbleibender Bildqualität. | Scannen doppelt breiter OTs; ideal f. Schnellschnitt-Anwendung; mit vollwertigem IVDR-konformen Pathologie-Management-System (PMS) inkl. integrierter Quantifizierungsmodule; auch als Stand-alone-Gerät erhältlich. | Scannen doppelt breiter OTs; optimiert f. höchsten Durchsatz in der histopathologischen Routinediagnostik: direkte Beladung mit Färber-Racks, mit vollwertigem IVDR-konformen PMS inkl. integrierter Quantifizierungsmodule; optionale 40x Wasserimmersion; auch als Stand-alone-Gerät erhältlich. | 9 Filterplätze für FL-Scanning, automat. Wechsel von DL- und FL-Scannen über Profilzuordnung, verschiedene FL-Konfigurationen (Kamera und Lichtquelle), mit Quadband-Filter optimal für FISH-Färbungen, Batch-Preview-Funktion, kontinuierliches Beladen mgl. (nur SCAN II). | vollautomatischer Hochdurchsatzscanner (99,5% First-Time-Right-Rate), optimierte Gewebeerkennung für reduzierte Scanzeit/Dateigröße, 3D-Chip für Hochgeschwindigkeits-Multi-Layer-Scans, DICOM-Konformitätserklärung, Remote-Zugriff auf den Scanner. | einfachste Handhabung; in 15 Min. zum Power User; flexibel auch für Nicht-Standard-Proben; vollautomatisiert; kompaktes Gerät; Plug-n-Play und einfache Installation; intuitive Bedienung des Scanners und des Viewers; höchste Bildauflösung und Stitchingqualität; hohe Ausfallsicherheit; flexible Finanzierung | sehr flexibles und aufrüstbares System, das mit verschiedenen optischen Modi arbeiten kann; Scannen von übergroßen OT; höchste Bildauflösung und höchste Stitchingqualität; Scanner mit optional integrierter preisgekrönter Bildanalyse- und Gewebszytometrie Software inkl. Deep Learning Algorithmen und Machine Learning Modul für automatisierte histologische Klassifikation; Export von ganzen Virtual Slides, Analyserohdaten und Statistiken; IVDR- und MDR-konformes Decision Support System für die Histopathologie. | |||
Abk.: DL = Durchlicht; FL = Fluoreszenz; IMS = Imagemanagement-Software; LS = Linsensystem; NA = Numerische Apertur; OT = Objektträger; ÖL = Ölimmersion; SD = Sichtdistanz; SL = Slideboarder; ZB = Zeitbedarf
Alle Tabellen basieren auf Herstellerangaben und erheben keinen Anspruch auf Vollständigkeit und Richtigkeit.